АНАЛІЗ РОСТУ ШТАМУ LIMOSILACTOBACILLUS FERMENTUM НА ГЛЮКОЗО-МАЛЬТОЗНИХ ПОЖИВНИХ СЕРЕДОВИЩАХ

Автор(и)

  • А. Д. Хабленко Інститут продовольчих ресурсів НААН, м. Київ, Україна, Національний технічний університет України «Київський політехнічний інститут імені Ігоря Сікорського» https://orcid.org/0000-0002-6260-2619
  • С. Г. Даниленко Інститут продовольчих ресурсів НААН, м. Київ, Україна https://orcid.org/0000-0003-4470-4643
  • О. М. Дуган Національний технічний університет України «Київський політехнічний інститут імені Ігоря Сікорського» https://orcid.org/0000-0002-5646-917X
  • О. В. Боднарчук Інститут продовольчих ресурсів НААН, м. Київ, Україна https://orcid.org/0000-0003-3092-4354

DOI:

https://doi.org/10.31073/foodresources2025-24-08

Ключові слова:

молочнокислі бактерії, поживне середовище, мальтоза, Limosilactobacillus fermentum, метаболізм цукрів

Анотація

Предмет. Молочнокислі бактерії (МКБ) мають широкий спектр використання у багатьох галузях промисловості. Вибір оптимального поживного середовища є важливим етапом при дослідженні росту та отриманні біомаси МКБ. Одним із важливих вуглеводних компонентів поживних середовищ є мальтоза, що використовуються для культивування багатьох мікроорганізмів. Отже дослідження, що стосуються ефективності мальтози як джерела вуглеводів для МКБ, є актуальними та можуть бути використані з метою подальшої оптимізації середовищ. Мета. Дослідження особливостей росту штаму L. fermentum на мальтозовмісних поживних середовищах та оцінка впливу мальтози на основні кінетичні параметри культури. Методи. У роботі використано штам L. fermentum, який культивували у мальтозовмісних поживних середовищах М – 2% (мас/об) мальтози, Г-М – 1% (мас/об) мальтози і 1% (мас/об) глюкози і контрольному середовищі Г з концентрацією глюкози 2% (мас/об). Кількість біомаси аналізували висівом серійних розведень на агаризоване середовище МРС, зміни рН – потенціометрично, зміни кількості редукуючих цукрів – фотоколориметричним методом. Результати. Виявлено позитивний ефект середовища Г-М на ріст штаму за значеннями кількості клітин 9,42 ± 0,09 КУО/мл порівняно з М – 9,33 ± 0,01 КУО/мл. Встановлено збіжні значення рН при культивуванні на усіх дослідних середовищах та відмінності у споживанні вуглеводів штамом. Найвищі розраховані значення питомої швидкості росту виявлені для дослідних середовищ М (0,65 ± 0,01 год-1) і Г-М (0,59 ± 0,06 год-1), порівняно з Г (0,45 ± 0,03 год-1). Сфера застосування результатів. Отримані результати вказують на можливість використання мальтози в якості основного або ж додаткового джерела вуглецю для культивування штаму L. fermentum та подальшого використання мальтозовмісних компонентів з метою оптимізації поживного середовища.

Завантаження

Дані завантаження ще не доступні.

Посилання

Hébert, E. M., Raya, R. R., Savoy de Giori, G. (2004). Evaluation of Minimal Nutritional Requirements of Lactic Acid Bacteria Used in Functional Foods. У Environmental Microbiology (с. 139–148). Humana Press. https://doi.org/10.1385/1-59259-765-3:139 (date of access: 12.04.2025).

Mota-Gutierrez, J., Cocolin, L. (2021). Current trends and applications of plant origin lactobacilli in the promotion of sustainable food systems. Trends in Food Science Technology, 114, 198–211. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2021.05.030 (date of access: 12.04.2025).

Khablenko, A., Danylenko, S., Duhan, O., & Stotska, O. (2024). Vyvchennia rostu i utylizatsii osnovnykh vuhlevodiv pyvnoho susla shtamom Limosilactobacillus fermentum. Naukovi pratsi Natsionalnoho universytetu kharchovykh tekhnolohii, 30(6), 7–17.

Meruvu, H., Harsa, S. T. (2022). Lactic acid bacteria: isolation–characterization approaches and industrial applications. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 1–20. https://doi.org/10.1080/10408398.2022.2054936 (date of access: 12.04.2025).

Gänzle, M. G., Follador, R. (2012). Metabolism of Oligosaccharides and Starch in Lactobacilli: A Review. Frontiers in Microbiology, 3. https://doi.org/10.3389/fmicb.2012.00340.

Vera, A., Rigobello, V., Demarigny, Y. (2009). Comparative study of culture media used for sourdough lactobacilli. Food Microbiology, 26 (7), 728–733. https://doi.org/10.1016/j.fm.2009.07.010 (date of access: 12.04.2025).

Ooi, M. F., Foo, H. L., Loh, T. C., Mohamad, R., Rahim, R. A., Ariff, A. (2021). A refined medium to enhance the antimicrobial activity of postbiotic produced by Lactiplantibacillus plantarum RS5. Scientific Reports, 11(1). https://doi.org/10.1038/s41598-021-87081-6 (date of access: 12.04.2025).

Simpson, P. J., Fitzgerald, G. F., Stanton, C., Ross, R. P. (2006). Enumeration and identification of pediococci in powder-based products using selective media and rapid PFGE. Journal of Microbiological Methods, 64 (1), 120–125. https://doi.org/10.1016/j.mimet.2005.04.019 (date of access: 12.04.2025).

Bhagavan, N. V., Ha, C.-E. (2011). Simple Carbohydrates. У Essentials of Medical Biochemistry (с. 65–74). Elsevier. https://doi.org/10.1016/b978-0-12-095461-2.00008-4 (date of access: 12.04.2025).

Dave, R. I., Shah, N. P. (1996). Evaluation of Media for Selective Enumeration of Streptococcus thermophilus, Lactobacillus delbrueckii ssp. bulgaricus, Lactobacillus acidophilus, and Bifidobacteria. Journal of Dairy Science, 79 (9), 1529–1536. https://doi.org/10.3168/jds.s0022-0302(96)76513-x (date of access: 12.04.2025).

Neubauer, H., Glaasker, E., Hammes, W. P., Poolman, B., Konings, W. N. (1994). Mechanism of maltose uptake and glucose excretion in Lactobacillus sanfrancisco. Journal of Bacteriology, 176 (10), 3007–3012. https://doi.org/10.1128/jb.176.10.3007-3012.1994 (date of access: 12.04.2025).

Ehrmann, M. A., Vogel, R. F. (1998). Maltose metabolism ofLactobacillus sanfranciscensis: cloning and heterologous expression of the key enzymes, maltose phosphorylase and phosphoglucomutase. FEMS Microbiology Letters, 169 (1), 81–86. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.1998.tb13302.x (date of access: 12.04.2025).

Stolz, P., Böcker, G., Vogel, R. F., Hammes, W. P. (1993). Utilisation of maltose and glucose by lactobacilli isolated from sourdough. FEMS Microbiology Letters, 109(2-3), 237–242. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.1993.tb06174.x (date of access: 12.04.2025).

Gobbetti, M., Corsetti, A., Rossi, J. (1995). Maltose-fructose co-fermentation by Lactobacillus brevis subsp. lindneri CB1 fructose-negative strain. Applied Microbiology and Biotechnology, 42(6), 939–944. https://doi.org/10.1007/bf00191194 (date of access: 12.04.2025).

Zhao, D., Meng, F., Zhou, L., Lu, F., Bie, X., Sun, J., Lu, Z., Lu, Y. (2021). Maltose effective improving production and regulatory biosynthesis of plantaricin EF in Lactobacillus plantarum 163. Applied Microbiology and Biotechnology, 105(7), 2713–2723. https://doi.org/10.1007/s00253-021-11218-w (date of access: 12.04.2025).

Fuso, A., Bancalari, E., Castellone, V., Caligiani, A., Gatti, M., Bottari, B. (2023). Feeding Lactic Acid Bacteria with Different Sugars: Effect on Exopolysaccharides (EPS) Production and Their Molecular Characteristics. Foods, 12 (1), 215. https://doi.org/10.3390/foods12010215 (date of access: 12.04.2025).

Xu, H., Li, D., Jiang, X., Pei, Q., Li, Z., Madjirebaye, P., Xie, M., Xiong, T., Liu, Z. (2025). Screening of Lactic Acid Bacteria Isolated from Fermented Cowpea and Optimization of Biomass Production Conditions. Foods, 14(2), 150. https://doi.org/10.3390/foods14020150 (date of access: 12.04.2025).

Mateles, R. I. (1960). Ferricyanide Reduction Method for Reducing Sugars. Nature, 187(4733), 241–242. https://doi.org/10.1038/187241a0 (date of access: 12.04.2025).

Kushkevych, I., Kotrsová, V., Dordević, D., Buňková, L., Vítězová, M., Amedei, A. (2019). Hydrogen Sulfide Effects on the Survival of Lactobacilli with Emphasis on the Development of Inflammatory Bowel Diseases. Biomolecules, 9 (12), 752. https://doi.org/10.3390/biom9120752 (date of access: 12.04.2025).

Zeng, M., Oh, J., van Pijkeren, J., Pan, X. (2023). Selective utilization of gluco‐oligosaccharides by lactobacilli: A mechanism study revealing the impact of glycosidic linkages and degree of polymerization on their utilization. Journal of Food Science. https://doi.org/10.1111/1750-3841.16851 (date of access: 12.04.2025).

Vrancken, G., Rimaux, T., De Vuyst, L., Leroy, F. (2008). Kinetic analysis of growth and sugar consumption by Lactobacillus fermentum IMDO 130101 reveals adaptation to the acidic sourdough ecosystem. International Journal of Food Microbiology, 128 (1), 58–66. https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2008.08.001 (date of access: 12.04.2025).

Gerez, C. L., Cuezzo, S., Rollán, G., Font de Valdez, G. (2008). Lactobacillus reuteri CRL 1100 as starter culture for wheat dough fermentation. Food Microbiology, 25 (2), 253–259. https://doi.org/10.1016/j.fm.2007.10.011 (date of access: 12.04.2025).

##submission.downloads##

Опубліковано

2025-06-05

Як цитувати

Хабленко, А. Д., Даниленко, С. Г., Дуган, О. М., & Боднарчук, О. В. (2025). АНАЛІЗ РОСТУ ШТАМУ LIMOSILACTOBACILLUS FERMENTUM НА ГЛЮКОЗО-МАЛЬТОЗНИХ ПОЖИВНИХ СЕРЕДОВИЩАХ. ПРОДОВОЛЬЧІ РЕСУРСИ, 13(24), 74–82. https://doi.org/10.31073/foodresources2025-24-08

Номер

Розділ

Технічні науки